3. Diagnóstico de la Rinitis Atrófica

El diagnóstico de la RA se puede realizar según síntomas clínicos y presencia de lesiones características, y según pruebas laboratoriales, siendo estas últimas las que confirmarán el diagnóstico.

3.1. Diagnóstico clínico-lesional

3.1.1. Rinitis por B. bronchiséptica

El diagnóstico clínico se caracteriza básicamente por toses y estornudos en lechones de 3 a 4 semanas de edad. Puede acompañarse también por congestiones nasales, rinitis y descargas serosas o mucopurulentas, tanto nasales como oculares. La lesión característica se basa en una atrofia de los cornetes nasales ventrales, que a diferencia de lo que ocurre en la rinitis por Pasteurella multocida toxigénica, ésta no progresa.

3.1.2. Rinitis por P. multocida toxigénica 

El cuadro clínico se suele desarrollar en cerdos de entre 4 y 12 semanas de edad. El cuadro inicial se acompaña de estornudos y ronqueras, con una rinitis catarral. Este cuadro deriva en descargas nasales y oculares de carácter seroso e incluso mucopurulento. No obstante, el cuadro más característico es una deformidad facial, que se caracteriza por desviación del tabique nasal, braquicnatia superior y pliegues cutáneos de la parte dorsal de la nariz.

Mediante un corte sagital de la jeta entre el segundo y tercer molar, se observará una marcada rinitis atrófica, caracterizada por la atrofia de los cornetes ventrales e incluso, en los casos más severos, por una ausencia de éstos.

En ambos casos,cuando los cuadros no son muy graves, se producirán retrasos en el crecimiento y un incremento en los índices de conversión en los animales infectados, siendo esto responsable directo de las pérdidas económicas.

3.1.3. Bronconeumonía por Bordetella bronchiseptica

Existe otro cuadro causado por Bordetella bronchiseptica que afecta a lechones de temprana edad, entre 3-4 días de vida, caracterizado con toses y disnea. Se trata de un cuadro de bronconeumonía, que aunque no es un hecho tan frecuente como la rinitis, es relativamente severo debido a su elevada morbilidad e incluso puede provocar la muerte de algunos animales que no sean tratados adecuadamente con antibióticos. Las lesiones características de este cuadro son una bronconeumonía catarral-purulenta, que afecta a los lóbulos apicales.

3.2. Diagnóstico laboratorial

Dentro del diagnóstico laboratorial, existen varias alternativas que dependerán de si el diagnóstico quiere realizarse a nivel de granja o a nivel individual. Básicamente se realizará con muestras de suero (diagnóstico serológico) o muestras procedentes de hisopos nasales o de pulmones (diagnóstico bacteriológico y diagnóstico de PCR).

3.2.1. Diagnóstico serológico

Mediante ELISA se pueden detectar anticuerpos antitoxina de P. multocida. No se puede utilizar en animales vacunados, ya que existe reacción cruzada. Estos anticuerpos, son poco inmunógenos y en algunos cerdos se manifiestan pasados unos meses tras la infección. Esto pone de manifiesto que no es una técnica útil a nivel individual. Se deberá utilizar en muestreos de granjas no vacunadas para determinar si ésta se ha infectado. En el caso de Bordetella bronchiseptica, la mayoría de la población porcina tiene anticuerpos frente a este microorganismo, lo que implica una baja utilidad de estas técnicas.

3.2.2. Diagnóstico bacteriológico 

3.2.2.1. Rinitis 

El cultivo bacteriano va a ser el método de elección para diagnosticar definitivamente una rinitis por B. bronchiseptica. Las muestras se tomarán a partir de hisopos tomados profundamente en ambas fosas nasales, con cuidado de no lesionar los cornetes. Se utilizarán hisopos con medio de transporte y de bastón flexible o de plástico (los de madera se rompen fácilmente en la extracción) y se enviarán en menos de 24 horas al laboratorio. Este microorganismo crece fácilmente en medios de cultivo rutinarios como agar sangre y agar MacConkey. Como se suele partir de muestras muy contaminadas con flora saprofita, es preferible utilizar medios selectivos, como el de Smith-Baskerville.

En el caso de P. multocida toxigénica (PMT), primero hay que aislar la bacteria y después realizar técnicas complementarias para determinar si se trata de una cepa toxigénica. Estas técnicas complementarias se basan en inoculación de extractos bacterianos en animales de laboratorio (ratón o cobaya) o mediante inoculación en cultivos celulares (líneas celulares Vero o de embrión bovino pulmonares). Estas técnicas están en desuso debido a la complejidad en su elaboración y su elevado coste económico. Una técnica que simplifica la manipulación de animales o cultivos celulares es el ELISA que detecta toxina a partir de cultivo. Se detecta por agotamiento en placa de agar sangre, sin necesidad de aislar previamente la PMT.

3.2.2.2. Bronconeumonía por B. bronchiseptica

Se tomarán muestras de pulmón, preferiblemente pulmones enteros, y se remitirán al laboratorio en menos de 24 horas, bajo condiciones de refrigeración. El cultivo se realiza como en el caso de rinitis.

3.2.2.3. PCR 

Las técnicas más recientes son las que se basan en la PCR (Reacción en Cadena de la Polimerasa), que amplifican fragmentos específicos del gen que codifica la toxina de PMT. Esta técnica se utiliza con la intención de aumentar la sensibilidad del cultivo bacteriano o el ELISA de cultivo, ya que en muchas ocasiones, existe muy poca cantidad de bacteria en el hisopo, que se enmascara con la presencia elevada de flora saprofita, o bien no se detecta debido a su excreción inconstante. Estudios comparativos reflejan que la PCR ha resultado ser más sensible que el cultivo y el ELISA, tanto a partir de hisopos nasales como sobre cultivos bacterianos.

3.3. Muestras de elección para el diagnóstico

En las siguientes tablas, se refleja el tipo y análisis para cada tipo de muestra, así como el muestreo que debe aplicarse en cada situación. En el caso de querer determinar si un colectivo es portador de RA, simplemente hará falta aplicar un muestreo. En casos que se quiera evaluar si los animales son portadores, como por ejemplo en lotes de reposiciones o animales de gran valor económico, se debe realizar las técnicas en el 100% de los animales y de manera repetida, porque la excreción de la PMT no es constante.